250mm代表色谱柱长度，46代表色谱柱内径，5m代表色谱柱填料颗粒直径
色谱柱由柱管、压帽、卡套（密封环）、筛板（滤片）、接头、螺丝等组成。
一要看清说明书后再使用 ，色谱柱内部保存着什么溶剂一定要看清楚，也包括说明书上建议的维护保养规定， 二要用纯水冲洗色谱柱才能把缓冲液冲洗干净 使用强溶剂冲洗色谱柱对内部填料的损伤是最大的，三要色谱柱应该保存在纯乙腈或甲醇中。
理论上液相色谱柱不同于气相色谱柱需要活化，但是由于液相色谱柱内部保存的有机系具有挥发性，因此在使用前还是应该用小流速的和色谱柱内部相同的溶剂冲洗一定的时间。
首先在开始使用系统以前检查柱子有否微生物生长，否则柱子会堵塞，柱压会升高到无法接受的水平。然后，不接检测器，正向安装色谱柱，使用纯甲醇以06ml/min流速冲洗约10倍柱体积。
再连接检测器，用纯甲醇以06ml/min流速冲洗约20倍柱体积。
然后使用去离子水以06ml/min流速冲洗约20倍柱体积。
最好再确保连接好保护柱（多使用相应柱制造商针对性提供的保护柱），再用选用的洗脱液以06ml/min流速平衡1h以上，进样检测。同样，若洗脱液中含有缓冲盐类，在用分析洗脱液平衡之前，先用不含缓冲盐的同比例洗脱液过渡，冲洗约10倍柱体积，避免缓冲盐在分析柱内析出。
特别注意：
①洗脱液要求是新制的缓冲液。对于阳离子交换柱，多用柠檬酸或酒石酸缓冲液（或其混合溶液）、邻苯二甲酸缓冲液，pH范围从25到65；对于阴离子交换柱，多用磷酸缓冲液、硝酸铵溶液（1mMol/L），邻苯二甲酸缓冲液，pH范围从25到65。绝对禁止使用水杨酸缓冲液，因水杨酸分解产物会改变固定相的性质。洗脱液在使用以前必须用045um滤膜过滤并彻底脱气，以防止发生检测和泵送问题。
②提倡在室温环境使用，为了提高分析的稳定性，可以设置高于室温5～10℃的柱温，最好不要在40℃以上使用。
③使用过程中不要超过其耐受最高压力。
④增加流速或者降低流速要采取小的间隔变化以防止柱床的扰动。更换柱子，必须先降低流量至0，等待洗脱液完全流出柱子，压力变化到0（约2min）后再更换。
⑤必须防止将来自流动相或者样品中的疏水性或与流动相极性差别很大的化合物进入色谱柱，特别地，要绝对禁止导入颗粒杂质，以防止操作压力增高，污染物难以或者不能去除。
（6）分析完毕，净化程序基本同C18柱，先用去离子水以06ml/min流速冲洗约20倍柱体积。然后用甲醇以06ml/min流速冲洗约10倍柱体积，纯甲醇饱和后密封保存即可。（注意：一定要确保在柱子内没有缓冲液或者其他含盐类的洗脱液的情况下保存色谱柱。）
（7）长时间保存后重新使用，重复上述（1）～（6）即可。
第一、安捷伦的色谱柱有很多种，所以要分清类型去冲洗。
第二、作为普通C18柱，尤其是硅胶基质的普通C18柱，对酸碱盐以及水，都是造成柱子的损坏的流动相构成。水不能过多（除了带AQ的纯水柱，一般各家品牌都有这款防水柱）我个人认为只要超过80%的水的流动相，都会造成C18的寿命缩短。所以做高水相的流动相分析时请注意选合适的柱子。酸对柱子的损伤是不可逆的，一定要控制PH，我个人认为PH在2以下的都要做好费柱子的准备。碱性条件是对于硅胶基质的C18的弱项，一般的硅胶基质的C18碱性条件都不太耐用，但现在也有碱性PH11的柱子，但比较贵。盐对色谱柱的影响主要是盐析造成的，而且是致命。
第三冲洗方法的问题。冲洗方法根据使用的流动相和样品的不同冲洗方法要加以区分。一般不加酸碱盐，水相也不高的情况（如甲醇水60:40），无需太过冲洗，冲洗的目的就是为了把样品的杂质冲出即可。保存流动相保存即可。酸和碱的条件下，原则上是将酸碱冲出色谱柱，保存在甲醇水即可（如60:40比例可根据要使用的流动相，只要水相不高即可）。盐的条件比较麻烦，处理不好，不仅仅色谱柱出问题而且仪器也比较麻烦。常用的就是高水相流动相甲醇-水（10：90）将盐冲出（注意压力），然后用纯甲醇冲洗（这一步是恢复高水相对色谱柱的损伤），最后保存在一般的甲醇水体系即可。
第四点，冲洗的时候注意是压力，最好是从小流速开始慢慢提升流速到压力许可的范围。冲洗的时间，准确的是流量一般色谱柱的冲洗都要达到10-20倍的柱体积。
在使用液相色谱C18仪柱过程中，须注意以下事项：
1、新C18色谱柱在使用前，须先用甲醇或乙腈试剂以20倍柱体积低流速冲洗，作用是使固定相能充分润湿、碳链舒展，使色谱柱的性能达到好状态。具体操作是，将配制好65%的乙腈/水冲洗后，把色谱柱进口端连接在色谱仪上，出口端放空（不可连上检测器，以免污染了检测器），以01ml/min~05ml/min的低流速将色谱柱中的清稀溶液吹干，过20分钟后再接上检测器，以10ml/min的流速，继续冲洗2~8小时；
2、液相色谱仪检测分析样品完毕后，须冲洗色谱柱。尤其是流动相中含有酸或盐时，需将色谱柱中的酸或盐冲洗干净，通常建议用10%甲醇水冲洗20倍柱体积；
3、若色谱柱处于长期闲置状态时，要将色谱柱冲洗，建议冲洗3-4小时以上，后保存在纯有机试剂或高比例的有机试剂溶液（如90%甲醇水）中；
4、由于C18柱的固定相疏水性较强，在使用过程中尽量不要使用高水相条件，若水相比例过高易引起固定相疏水塌陷，引起柱效迅速下降，甚至造成不可逆的负面影响；由于碳载量高，表现尤为明显，建议使用过程中水相比例不超过90%；
5、色谱柱压力升高、柱性能下降：通常为色谱柱被污染，对色谱柱进行再生处理可恢复部分柱效；
6、色谱柱压力骤升：通常由盐析出或筛板堵塞引起，若是盐析出，用10%甲醇水低流速冲洗至压力恢复即可；若判断并非盐析出，以纯甲醇或10%甲醇水为流动相反冲色谱柱（将色谱柱反接，不接检测器），若反冲半小时仍无效果则说明反冲无效，需寻找其他原因。
C18色谱柱是一种常用的反相色谱柱，在分离和纯化化合物时具有重要的应用价值。然而，在使用C18色谱柱时，由于样品的复杂性和色谱柱的选择性，色谱柱容易被样品中的杂质和残留物污染，降低其分离效果和寿命。因此，对于C18色谱柱的冲洗方法，具有重要的意义。C18色谱柱的冲洗方法可以分为初步冲洗和彻底冲洗两个步骤。初步冲洗通常使用乙腈或甲醇与水的混合物作为流动相，在初次使用或换样时，将流动相中的杂质和残留物清除。一般建议先使用70%的乙醇或甲醇水混合物进行初步冲洗，再逐渐增加乙醇或甲醇的浓度，直到达到实验要求。彻底冲洗则是在样品中出现明显干扰或柱子老化时进行的。通常采用高浓度的乙腈或甲醇进行彻底冲洗，以去除柱子表面的污染物和杂质，恢复柱子的分离性能。在进行彻底冲洗时，建议使用等体积的纯乙腈或纯甲醇，缓慢地将溶液流过柱子，直到出现干净的基线。除了以上两种方法外，还有一些小技巧可以帮助延长C18色谱柱的使用寿命。例如，在使用完柱子后，可以将流动相更换为保护液（如50%乙醇或甲醇），以防止柱子干燥或污染。此外，也可以在柱子前面加上一个针型过滤器，以过滤掉样品中的大颗粒物质，避免对柱子的损伤。总之，对于C18色谱柱的冲洗方法，需要根据实验的具体要求和柱子的使用情况进行选择，同时也需要注意保护柱子，以延长其使用寿命。
一般的正相反相柱应该都能反冲，只有两端筛板孔径不对称的柱子不能反冲，不过目前这样的柱子已经比较少见了。反冲是为了把柱头的污染物冲洗掉，反冲后还是正着用比较好，以免柱子的两头都被污染。我们一直提倡的是：正向使用，反向冲洗。
2、我在做方法开发的时候,用乙腈和水作为流动相,在调整梯度的时候发现,刚开始用60%乙腈, RT为25分钟,调到40%乙腈,RT没有变化,30%也没有变化,一直调到20%的时候,RT突然变到了约13分钟,请问这是什么原因我用的是离子交柱。
答：离子交换柱的保留时间主要由洗脱液的离子强度和pH决定，你现在讲的比较简单，需要把你的方法说的详细一点才能做具体的分析。譬如分析物是什么情况，其含有极性电离基团和非极性基团是什么性质？离子交换柱是聚合物基质还是硅胶基质？水相是什么缓冲盐？
3、对于一根常用的c18柱，拿到一根新柱的时候应该怎样进行活化及维护？为什么要这样做？
答：新柱活化，实际上是一个平衡的过程，除了用流动相平衡外，有时候还必须用所测样品对新柱进行平衡，特别是测定分子量比较高的多肽，尤其重要。因为分子量高的物质分子，扩散速度慢，平衡所需时间也相应较长。具体平衡方式也很简单，多进几次样品，直到峰面积和保留时间稳定，再进行正式进样测定。
如果要加快平衡时间，把前面用来平衡的进样样品浓度加大，或者不等洗脱完成，连续进样多针。用待测物对新柱平衡，目的是将硅胶基质填料表面具有非特异性吸附的位点的吸附能力饱和掉。
4、测定多肽，一般采用什么柱子？流动相是乙腈和水，还有微量的TFA。特别是像类似三肽的短肽，应该怎么选择柱子？
答：分子量不高的多肽一般选用常规C18柱就能测定，也有用离子交换柱、水性C18柱和Hilic亲水作用柱的。
5、氨基柱在进酸性样品时，很伤柱子，如使用一段时间后，柱效降低，峰形改变，如何恢复？
答：氨基柱测酸性样品，应该是用氨基柱的HILIC模式。酸的存在可能会使略带负电荷的氨基官能团质子化，导致使用一段时间后对于某些类的分析物保留性质有所改变或表现在柱效下降。建议：用5-10倍的柱体积的含05-10％NH3的乙腈-水(50:50)溶液冲洗该柱（冲洗后当然要再用不含碱的流动相洗去多余氨），之后再进行分析这类酸性分析物时建议在流动相中略微添加少许氨如01％。
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